宁波太原细胞高效转染试剂

转染的注意事项：培养基中的物品物品，比如青霉素和链霉素，是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率低。所以，在转染培养基中不能使用物品，甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样，在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染，不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素，因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外，为了保证无血清培养基中细胞的健康生长，使用比含血清培养基更少的物品量。大多数已建立的细胞系都是非整倍体，原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化，这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化，融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如，新鲜融化的NIH3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率，融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此，如果观察到转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。大部分外源DNA会被核酸酶降解或随细胞分裂而稀释。宁波太原细胞高效转染试剂

细胞转染，你至少要掌握以下几点：主要有下面几种方法：：化学法：磷酸钙法、DEAE-右旋糖苷法、阳离子脂质体法；物理法：电穿孔法、显微注射法、颗粒传递法；细菌介导法：逆转录细菌、腺细菌A.阳离子脂质体法：带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。特点：简单通用，适用性广，转染效率高，重复性好，但转染时需除血清，转染效率随细胞类型变化大。由于脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会远大于悬浮细胞，所以贴壁比悬浮转染效率要高。悬浮细胞建议使用电穿孔法。B.电穿孔法：利用高压电脉冲对细胞膜的干扰，使其形成利于核酸进入的微孔。宁波太原细胞高效转染试剂瞬时表达分析检测未重组质粒DNA上基因的表达。

细胞转染为什么不能加血清：不同的细胞及转染试剂要求转染的条件是不同的。较好是在靠前次实验前做一个预实验，比如：HeLa，293，CHO，COS7，MCF－7，HepG2等细胞，是否加血清，对不同的细胞是有不同的影响的，有些细胞是可以有血清的，有些加血清就会受影响。转染后在6小时左右较好换液且换为有血清的培养基，其一因为普通转染试剂对细胞的毒性作用大，其二可降低因血清的缺乏引起的细胞的死亡。转染时不加血清是防止血清的干扰作用，转染后可适时加入。加入过早会引起未转染细胞的优势生长，过晚会引起较多细胞死亡。可实时观察1/5细胞变圆的时候加入血清

细胞转染的常用方法：细菌转染：原理：对于用脂质体不能实现转染的细胞，可以采用细菌转染。可用于蛋白质过表达或克制，是临床研究中较常用的方法。它通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中，可用于难转染细胞、原代细胞的稳定性转染。实验步骤：通过基因克隆生成重组细菌→采用非细菌法转染包装细胞系，扩增并分离得到重组细菌颗粒→纯化并滴定细菌液→转导目的细胞（含有细菌特异性的受体）→去除培养物中的细菌，并加入新鲜培养基→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。代细胞和传代次数多的细胞都不是较佳选择。

细胞转染实验注意事项：1.如为贴壁生长细胞，一般要求在转染前一日，必须应用胰酶处理成单细胞悬液，重新接种于培养皿或瓶，转染当日的细胞密度以70-90%（贴壁细胞）或2×106-4×106细胞/ml（悬浮细胞）为宜，较好在转染前4h换一次新鲜培养液。2.用于转染的质粒DNA必须无蛋白质，无RNA和其他化学物质的污染，OD260/280比值应在1.8以上。3.培养基中的血清在开始准备DNA和阳离子脂质体试剂稀释液时要使用无血清的培养基，因为血清会影响复合物的形成。其实，只要在DNA-阳离子脂质体复合物形成时不含血清，在转染过程中是可以使用血清的。总染色体重组或基因调控变化等而演化。唐山正规细胞高效转染试剂

在瞬时转染质粒中往往都含有一个报告基。宁波太原细胞高效转染试剂

影响转染试验的因素：1.转染试剂跟细胞系不匹配转染试剂跟细胞系也是讲究配合默契的，使用同一种试剂，不同细胞系转染效率通常不同。但细胞系的选择通常是根据实验的需要，因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献，通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然，较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。因为有些细胞系是不稳定的，可能随着培养时间的改变，培养条件的不同，不同的选择压力，可能引起不同的克隆选择。因此就算是同一个细胞系，在不同条件下转染能力的差异可能会很大。宁波太原细胞高效转染试剂